Crescimento de brotações axilares a partir de diferentes explantes, variedades, meios de cultura e métodos de subcultivo in vitro de Chrysanthemum morifolium
DOI:
https://doi.org/10.1590/2447-536X.v31.e312924Palavras-chave:
corte direto, crescimento, crisântemo, desempenho e subcultura, parte aérea axilarResumo
Chrysanthemum morifolium é uma flor de corte comercial propagada usando rebentos de raiz e estacas. O método tradicional inibe a ampliação da planta, portanto, culturas de tecidos são aplicadas. O objetivo principal da pesquisa foi revelar diferentes efeitos de explantes, variedades, meios de cultura e métodos de subcultivo no desempenho da parte aérea axilar desde a iniciação até a aclimatização. Pontas de brotos cultivadas em campo, terços e quinta nós; Olho de gato e Fiji rosa; meios de iniciação, aprimoramento e proliferação; métodos de subcultura de agrupamento aleatório; O corte direto da ponta da parte aérea e do nó para aclimatização foram investigados. Pontas de brotos de ‘Pink Fiji’ cultivados em meio MS contendo 2,0 mg L-1 BAP e 0,2 mg L-1 NAA produziram brotos axilares altos e reduziram posteriormente devido à redução de BAP e NAA. A redução da concentração do regulador de crescimento vegetal (PGR) diminuiu a parte aérea axilar, mas melhorou o desempenho da parte aérea axilar. No quarto subcultivo, a redução dos dados em todas as variáveis ocorreu devido à substituição de sacarose e gelita por açúcar e ágar locais. O meio MS de força total induziu melhor crescimento da parte aérea axilar do que outros no estágio de proliferação. Folhas amareladas, diminuição da altura da parte aérea e número de folhas foram observados em ‘Cat Eye’ na quinta subcultura e ‘Pink Fiji’ na sétima subcultura. Plantas altamente aclimatadas derivadas de pontas de brotos de Fiji Rosa com 86% e 83% de nós foram determinadas em uma mistura de casca de arroz queimada, esterco de jacinto e coqueiro (1:1:1, v/v/v). O corte direto aumentou o número de plantas como materiais de plantio em até 3 a 5 vezes em comparação com plântulas individuais. As descobertas podem ser aplicadas para acelerar a preparação de materiais de plantio qualificados e a comercialização do crisântemo.
Downloads
Referências
ALI, S.; RAZA, S.; SHAHZAD, S.; BATOOL, T.S.; MANZOOR, A. Regeneration of chrysanthemum (Chrysanthemum morifolium) via somatic embryogenesis and screening of clones for agronomic traits’, Plant Cell, Tissue and Organ Culture, v.153, n.3, p. 657–667, 2023. https://doi.org/10.1007/s11240-023-02506-6
ALSOUFI, A.S.M.; AHMED, Z.S; SALIM, A.M. The efficiency of interaction between cytokines and auxins in micropropagation of Chrysanthemum plant (Chrysanthemum indicum L.). 2nd Virtual International Scientific Agricultural Conference, IOP Conference Series: Earth and Environmental Science, v.735, p. 1-7. https://doi.org/10.1088/1755-1315/735/1/012048
BEURA, R.; PANDA, M.; BEURA, S.; BAHIRA, S. In vitro propagation of Chrysanthemum morifolium using shoot tip and nodal segment as explant. Global Journal for Pharma and Allied Sciences, v.1, n.2, p. 12-17, 2020.
BORODULINA, I.D.; TRUFANOVA, A.; SHEVCHENKO, G.; SOKOLOVA, G.; PLAKSINA, T. Optimization of clonal micropropagation of Chrysanthemum. Ukrainian Journal of Ecology, v.9, n.4, p. 676–678, 2019. https://doi.org/10.15421/2019_809
EISA, E.A.; TILLY-MANDY, A.; HONFI, P.; SHALA, A.Y.; GURURANI, A.; Chrysanthemum: A Comprehensive Review on Recent Developments on In Vitro Regeneration. Biology, v.11, p. 1774-1800, 2022. https://doi.org/10.3390/biology11121774
GUO, Y.; REN, G.; ZHANG, K.; LI, Z.; MIAO, Y.; GUO, H. Leaf senescence: progression, regulation, and application. Molecular Horticulture, v.1-5, p. 1-25. 2021. https://doi.org/10.1186/s43897-021-00006-9
HA, N.T.M., DO, C.M., HOANG, T.T., NGO, N.D., BUI, L.V., NHUT, D.T. The effect of cobalt and silver nanoparticles on overcoming leaf abscission and enhanced growth of rose (Rosa hybrida L. ‘Baby Love’) plantlets cultured in vitro. Plant Cell, Tissue and Organ Culture, v.141, p. 393-405, 2020. https://doi.org/10.1007/s11240-020-01796-4
HADIZADEH, H.; SAMEEI, L.; SHAKERI, A. Chrysanthemum, an ornamental genus with considrable medicinal value: A comprehensive review. South African Journal of Botany, v.144, p. 23-43, 2022. https://doi.org/10.1016/j.sajb.2021.09.007
IMTIAZ, M.; KHATTAK, A.M.; KHAN, M.A.; JALAL, F.; HUSSAIN, S.; SAID, F.; BO, H. Rapid in-vitro propagation of Chrysanthemum morifolium through shoot bud explants. Pakistan Journal of Botany, v.51, n.3, p. 1093–1098, 2019. https://doi.org/10.30848/PJB2019-3(11)
JAHAN, M.; ISLAM, M.R.; ISLAM, S.A.M.S.; DAS, P.; ISLAM, M.D.M.; KABIR, M.H.; MAMUN, A.N.K. Clonal propagation of Chrysanthemum morifolium Ramat using various explants obtained from field grown plants. GSC Biological and Pharmaceutical Sciences, v.16, n.2, p. 087–093, 2021. https://doi.org/10.30574/gscbps.2021.16.2.0231
MEKONEN, G.; EGIGU, M.C.; MUTHSUWAMY, M. In vitro Propagation of Banana (Musa paradisiaca L.) Plant Using Shoot Tip Explant. Turkish Journal of Agriculture-Food Science and Technology, v.9, n.12, p. 2339-2346, 2021. https://doi.org/10.24925/turjaf.v9i12.2339-2346.2883
JAN, T.; ULLAH, I.; MUHAMMAD, B.; TARIQ; MANSOOR, A.; ULLAH, Z.; NAWAZ, M.A. Efficient in vitro propagation of Amaranthus viridis L. Using node explants. Acta Scientiarum Polonorum, Hortorum Cultus, v.19, n.4, p. 41–51, 2020. https://doi.org/10.24326/asphc.2020.4.4
MEHEDI, M.N.H.; MITU, N.; ROBBANI, M.; SUKHI, K.F.N.; RAHMAN, M.H.S.; AL-NOOR, M.M. Impact of Different Explants and Growth Regulators on In vitro Regeneration of Chrysanthemum. Asian Journal of Biochemistry, Genetics and Molecular Biology, v.4, n.4, p. 10–18, 2020. https://doi.org/10.9734/ajbgmb/2020/v4i430112
MELLO, M.L.; ZANETTI BARROS, N.; SPERANÇA, M.A.; PEREIRA, F.M.V. Impurities in Raw Sugarcane Before and After Biorefinery Processing. Food Analytical Methods, v.15, n.1, p. 96–103, 2022. https://doi.org/10.1007/s12161-021-02105-1
MOHAMED, G.G.; AMER, A.M.; OSMAN, N.H.; SEDIKC, M.Z.; HUSSEIN, M.H. Effects of different gelling agents on different stages of rice regeneration in two rice cultivars. Saudi Journal of Biological Sciences, v.28, p. 5738-5744, 2021. https://doi.org/10.1016/j.sjbs.2021.06.003
PARK, J.S.; NAING, A.H.; KIM, C.K. Effects of ethylene on shoot initiation, leaf yellowing, and shoot tip necrosis in roses. Plant Cell, Tissue and Organ Culture, v.127, n.2, p. 425–431, 2016. https://doi.org/10.1007/s11240-016-1066-6
PATERNAK, T.P.; STEINMACHER, D. Plant Growth Regulation in Cell and Tissue Culture In Vitro. Plants, v.13, p. 327-350, 2024. https://doi.org/10.3390/plants13020327
PRATHYUSHA, N.; DORAJEERAO, A.V.D.; RAVINDRAKUMAR, K.; APARNA, D.; SALOMI SUNETHA, D.R. In vitro propagation of chrysanthemum (Chrysanthemum morifolium) cultivars from ray floret explants. The Pharma Innovation, v.10, n.10, p. 415-417, 2021.
SINURAT, E.; FRANSISKA, D.; UTOMO, B.S.B.; SUBARYONO, S.; NURHAYATI, N. Characteristics of powder agar extracted from different seaweeds species and locations in Indonesia. Journal of Applied Phycology, v36, p. 675-684, 2024. https://doi.org/10.1007/s10811-023-03084-y
THAKUR, A.; SIDHU, G.S.; SINGH, H. In vitro multiplication of peach rootstocks. Indian Journal of Horticulture, v80, n.3, p. 251-257, 2023. https://doi.org/10.58993/ijh/2023.80.3.4
WINARTO, B.; YUNIARTO, K.; WEGADARA, M. Axillary Shoots Derived from Thin Cell Layer and Adenine Sulphate Application in in vitro Mass Propagation of Gerbera [Gerbera jamesonii (H. Bolus ex Bolus f.)]. Notulae Scientia Biologiae, v.11, n.1, p. 63-76, 2019. https://doi.org/10.15835/nsb11110351
Downloads
Publicado
Como Citar
Edição
Seção
Licença
Copyright (c) 2025 Budi Winarto, Agus Supriyo, Jajuk Aneka Beti, Sudarto, Yulis Hindarwati, Sodiq Jauhari, Arif Susila, Joko Pramono

Este trabalho está licenciado sob uma licença Creative Commons Attribution 4.0 International License.





